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    深入剖析
    !如何利用CRISPR技術(shù)編輯人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞

    佚名 2024-06-03 18:39:31

    深入剖析
    !如何利用CRISPR技術(shù)編輯人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞?

    2016年09月06日訊 過去10年里誕生了兩種非常有用的生物學(xué)工具,第一個就是人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(iPSCs),這是一項榮獲諾貝爾獎的先進(jìn)科技產(chǎn)物

    ,2006年時研究者開始對小鼠進(jìn)行實驗,隨后在人類機體中進(jìn)行實驗
    ,研究者表示他們有可能將成體的皮膚細(xì)胞轉(zhuǎn)化成為多能干細(xì)胞
    ,隨后這些多能干細(xì)胞就能夠被誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化成為任何類型的細(xì)胞,這些細(xì)胞是個體基因組在細(xì)胞尺度的化身
    ,而且其可以幫助科學(xué)家開發(fā)出那些不能取自活體的細(xì)胞類型
    ,ipsCs通常能夠提供方法來模仿單成因及復(fù)雜的人類疾病,同時還可以指導(dǎo)進(jìn)行基于細(xì)胞的療法

    第二項工具就是CRISPR-Cas9系統(tǒng)

    ,其能夠?qū)蚪M中的任何區(qū)域進(jìn)行準(zhǔn)確的編輯,當(dāng)涉及傳統(tǒng)永生的細(xì)胞系
    ,比如HeLa或HEK293細(xì)胞系時
    ,利用CRISPR進(jìn)行切割或許會作為一個新手讓研究者學(xué)習(xí)數(shù)周,第二波基于CRISPR的方法常常是通過增強或者減弱基因表達(dá)的水平來發(fā)揮作用的
    ,而不是進(jìn)行基因的切割
    ,這或許可以使得這種方法變得更加有用。

    !如何利用CRISPR技術(shù)編輯人類誘導(dǎo)多能干細(xì)胞.png" />

    上述兩種技術(shù)的結(jié)合或?qū)聿豢晒懒康男?yīng),利用CRISPR編輯的iPSCs可以使得科學(xué)家對基因進(jìn)行操作來研究在特殊疾病背景下的基因功能

    ,或者去糾正病人細(xì)胞中的遺傳缺陷
    ,而其中一種挑戰(zhàn)就是幫助定位的無縫基因編輯技術(shù)或許就能夠確定不同ipsC細(xì)胞系的遺傳變異,CRISPR-Cas9技術(shù)就能夠幫助科學(xué)家制造出新型的僅通過單個核苷酸改變且用作特殊個體的質(zhì)控細(xì)胞

    盡管CRISPR-Cas9和人類iPSCs已經(jīng)成為研究者在實驗室中老生常談的話題了

    ,但對兩者進(jìn)行統(tǒng)一卻并不容易,想要研究基因功能的科學(xué)家如今正在發(fā)現(xiàn)
    ,在培養(yǎng)基中很難維持人類ipsCs
    ,而且也很難利用CRISPR進(jìn)行操作

    最基本的工作流程

    編輯且控制人類iPSCs細(xì)胞中的基因表達(dá)往往以兩條平行的工作流開始,首先就是保證多能細(xì)胞的可靠來源

    ,其次就是設(shè)計導(dǎo)向RNA
    ,即可以靶向作用基因且具有20個核苷酸的序列。為了利用導(dǎo)向RNA和Cas9核酸酶來轉(zhuǎn)染細(xì)胞
    ,電穿孔技術(shù)就是主要的方法
    ,因為其能夠幫助科學(xué)家在維持細(xì)胞活性的同時將大量的DNA及蛋白質(zhì)輸入到細(xì)胞中,由于人類多能干細(xì)胞在運輸過程中會沉默基因的表達(dá)
    ,因此就應(yīng)當(dāng)盡可能地避免慢病毒運輸
    。研究者通過追蹤細(xì)胞的形態(tài)、多潛能標(biāo)志以及細(xì)胞分化的能力來評估細(xì)胞的多能性
    ,核型分析技術(shù)通常就能夠確保細(xì)胞中有著正常數(shù)量的染色體
    ,而且ipsC細(xì)胞系可以被用來廣泛購買。

    人類多能干細(xì)胞VS人類腫瘤細(xì)胞系

    首先研究者在人類癌細(xì)胞系中嘗試CRISPR-Cas9工具

    ,當(dāng)他們準(zhǔn)備轉(zhuǎn)移到研究人類多能干細(xì)胞時
    ,他們發(fā)現(xiàn)人類的iPSCs屬于勞動密集型分布,而且難以維持
    。來自哈佛醫(yī)學(xué)院的研究者Susan Byrne說道
    ,有經(jīng)驗的研究者常常會花費一個月時間來學(xué)習(xí)人類iPSC的基本培養(yǎng)技術(shù),即使那樣
    ,由于新步驟和試劑的出現(xiàn)
    ,利用這些細(xì)胞進(jìn)行研究仍然是一個需要持續(xù)學(xué)習(xí)的過程。干細(xì)胞非常特殊
    ,其質(zhì)量影響著我們培養(yǎng)細(xì)胞以及利用導(dǎo)向RNAs靶向作用細(xì)胞的能力
    ,而我們看到的改變依賴于單一的供體及重編程的方法,有時候我們不得不優(yōu)化制造特殊干細(xì)胞系的步驟
    。來自霍普金斯大學(xué)醫(yī)學(xué)院的研究者Linzhao Cheng說道
    ,在一般情況下,甚至利用健康細(xì)胞系時
    ,我們應(yīng)當(dāng)期望降低10倍效率來將對人類ipsCs和ESCs進(jìn)行編輯

    開始了解我們的基因

    研究者表示,我們應(yīng)當(dāng)研究基因位點并且理解這些序列的功能

    ,比如
    ,在基因編輯之后被干擾的基因仍然會表現(xiàn)出某些生物活性,在某些情況下我們應(yīng)當(dāng)考慮基因位點發(fā)生了雙重切割
    ,而這目的是為了切除更大的基因區(qū)域

    選擇多種導(dǎo)向RNAs并且對其進(jìn)行檢測,如今大量的軟件都能夠選擇導(dǎo)向RNAs,但我們要記住

    ,特殊的導(dǎo)向RNA似乎并不能很好地進(jìn)行工作
    ,或者根本不會工作;來源于事實的一個非常簡單且最容易被忽視的原因就是根據(jù)我們的向?qū)гO(shè)計我們或許并沒有相關(guān)的基因組
    ,此外我們也應(yīng)當(dāng)需要考慮向?qū)У幕钚浴?/p>

    敲除VS精確編輯

    當(dāng)利用CRISPR-Cas9切割基因時

    ,兩個主要的分子途徑就會開啟來進(jìn)行DNA修復(fù),而且最終會確定隨后編輯作用的保真性
    ,這兩個修復(fù)通路同時會發(fā)生
    ,用作基因敲除的非同源性末端接合(NHEJ)能夠在DNA中產(chǎn)生小型的插入位點或剔除位點來阻斷基因的功能;另外一種名為同源性直接修復(fù)(HDR)的作用則會基于供體的長鏈DNA來產(chǎn)生精確的核苷酸改變

    目前研究者Hockemeyer及其同事正在開發(fā)新型策略來使得同源性直接修復(fù)發(fā)揮主要作用

    ,比如應(yīng)用特殊的化學(xué)物或利用來自不同物種的Cas9酶等,研究者說道
    ,我認(rèn)為在未來幾年里我們解決這些問題指日可待

    研究者Conklin的團隊開發(fā)出了一種快速的數(shù)字PCR技術(shù),其能夠?qū)DR和NHEJ的修復(fù)率進(jìn)行定量

    ,在包括人類ipsCs的多個細(xì)胞類型中
    ,上述兩種修復(fù)率并沒有互相關(guān)聯(lián),這就表明
    ,相比單單測定一種修復(fù)率而言
    ,同時測定兩種修復(fù)率是非常明智的,尤其是當(dāng)目標(biāo)是HDR的時候

    對切割進(jìn)行特性描述

    在細(xì)胞分化前和分化后

    ,測定或者掌握細(xì)胞的表型,比如形狀或特殊標(biāo)志物的存在
    ,都是我們證實是否在合適位置切割的最基本的方法
    ,利用和待編輯基因互補的DNA來補充編輯的細(xì)胞或許能夠恢復(fù)細(xì)胞的表型,如果細(xì)胞表型太精細(xì)不能測出微小改變的話
    ,研究者或許就應(yīng)當(dāng)嘗試對基因進(jìn)行第二次編輯來將其恢復(fù)至野生型

    此外研究者還抽取了基因編輯的基因組進(jìn)行調(diào)查,比如利用這些區(qū)域的PCR和Sanger測序結(jié)果等

    ,一種名為TIDE的算法可以重建預(yù)期突變的身份
    ,同時還能夠揭示其發(fā)生的機制。研究者M(jìn)ali說道
    ,對所有的蛋白編碼基因和外顯子組進(jìn)行測序或許就能夠幫助挑選已經(jīng)驗證的編輯
    ,測序是當(dāng)前的主要分析方法;從另一方面來講
    ,隨著時間遺傳差異性會不斷積累
    ,而這與細(xì)胞系并無關(guān)聯(lián)

    脫靶效應(yīng)

    一種抑制脫靶編輯的主要方法就是至少利用兩種或多種靶向作用相同位點的不同“向?qū)А?div id="jpandex" class="focus-wrap mb20 cf">,而這或許并不可能給出相同的脫靶結(jié)果

    ;一般而言,脫靶效應(yīng)并不是主要的問題所在
    ,至少對于大多數(shù)基礎(chǔ)科學(xué)家而言是這樣的
    ,相比癌細(xì)胞系而言,脫靶效應(yīng)往往并不太可能發(fā)生于人類的多能干細(xì)胞中
    ,但研究者如果真得非常關(guān)心的話
    ,進(jìn)行全外顯子組測序或許就是最佳的方法了。

    控制基因的表達(dá)而不是對基因進(jìn)行編輯

    如果希望對多能干細(xì)胞中對多能性表現(xiàn)非常重要的基因進(jìn)行敲除的話

    ,很明顯我們的運氣并不夠好
    ,我們或許并不能用死細(xì)胞得出太多信息,在這種情況下
    ,我們就需要提高或減弱基因的表達(dá)
    ,而擴大CRISPR-Cas9工具的功能或許就能達(dá)到這種目的;研究者們通常會使用一種“死亡版本”的Cas9
    ,其能夠結(jié)合到基因組中的預(yù)定位置但并不會切割DNA序列
    ,相反,死亡版本”Cas9的不同突變體要么會抑制轉(zhuǎn)錄(稱之為CRISPR干擾
    ,CRISPRi)
    ,要么會激活表達(dá)。

    近來一項研究發(fā)現(xiàn)

    ,對ipsCs篩查尋找功能缺失區(qū)域時
    ,相比CRISPR-Cas9而言,CRISPRi或許會比傳統(tǒng)的CRISPR更加有效
    ,CRISPRi能夠沉默95%的細(xì)胞中的基因表達(dá)
    ,而CRISPR-Cas9僅能夠沉默60%至70%細(xì)胞中基因的表達(dá),這是因為CRISPR-Cas9并不總是會引發(fā)移碼突變
    ,而移碼突變通常會使得蛋白質(zhì)部分或完全失去功能
    ,也就是說,成功地沉默基因的表達(dá)往往因細(xì)胞類型和位點不同而不同

    基因表達(dá)控制和基因編輯之間的主要差異就是

    ,在基因表達(dá)控制下,我們或許并不能永久地改變基因組
    ,我們可以擾亂細(xì)胞的功能
    ,比如沉默基因表達(dá)隨后逆轉(zhuǎn)基因的抑制作用;此外
    ,相比CRISPR-Cas9而言
    ,脫靶效應(yīng)或許更少地同CRISPRi和CRISPRa(CRISPR激活)相關(guān)。調(diào)節(jié)基因表達(dá)面臨的一個挑戰(zhàn)就是研究者很難選擇或設(shè)計一套堅實的導(dǎo)向RNAs,研究者表示
    ,在理想狀況下他們可以避免基因組的區(qū)域被核小體緊密圍繞
    ,而蛋白的纏繞往往會使得基因沉默,但在某些情況下
    ,這些區(qū)域就很有可能是研究者所要靶向作用的區(qū)域

    對于研究者而言,將CRISPRi和CRISPRa有效成功地運輸?shù)饺祟惗嗄芨杉?xì)胞中非常復(fù)雜

    ,研究者Cowen指出
    ,目前除非使用病毒載體的運輸方法,否則仍然很難將CRISPRi和CRISPRa運輸?shù)?0%至80%的細(xì)胞中
    ,而目前我們僅僅談?wù)摰氖?0%至40%的細(xì)胞
    ,研究者認(rèn)為這或許能給他們帶來一定幫助,因為在某些情況下他們很難或者不可能將ipsC分化成為特殊類型的細(xì)胞
    ,研究者Cowen長期利用CRISPRa來激活并且驗證報道基因
    ,他表示,在我們實驗室利用腎臟內(nèi)皮細(xì)胞就能夠知道報道基因是否在正常工作

    CRISPR基因編輯將首次用于人類治療失明

    根據(jù)新聞報道

    ,第一項測試人體內(nèi)基因編輯技術(shù)CRISPR的研究即將在美國展開。

    根據(jù)美聯(lián)社報道

    ,該研究計劃使用CRISPR治療導(dǎo)致失明的遺傳性眼部疾病

    的人這種情況有一個基因突變,影響視網(wǎng)膜的功能

    ,視網(wǎng)膜是眼睛后部的感光細(xì)胞
    ,對正常視力至關(guān)重要。這種情況是Leber先天性黑蒙的一種形式
    ,據(jù)美國國家衛(wèi)生研究院稱
    ,兒童失明最常見的原因之一,每10萬名新生兒中就有2至3名會受到影響

    這種治療方法將使用CRISPR來糾正突變

    ,CRISPR是一種讓研究人員能夠精確編輯DNA的工具美聯(lián)社報道,在一個特定的地點

    的研究人員將使用一種注射劑將治療直接傳遞到感光細(xì)胞

    ,根據(jù)Editas Medicine公司的一份聲明,Editas Medicine公司正在與Allergan一起進(jìn)行這項研究

    這項試驗將總共招收18名患者

    ,兒童(3歲及以上)和成人。

    這項新研究不同于中國科學(xué)家去年用CRISPR編輯雙胞胎嬰兒基因組的有爭議的研究

    。美聯(lián)社報道
    ,在這種情況下
    ,這位中國科學(xué)家編輯了胚胎的DNA,這些基因改變可能會遺傳給下一代
    。美聯(lián)社說
    ,在這項新的研究中,在兒童和成人身上進(jìn)行的DNA編輯不能傳給他們的后代

    科學(xué)家們剛剛用CRISPR解開人類基因組做了10件令人驚奇的事情:仿生人類的6個分子里程碑:最初發(fā)表在《生命科學(xué)》上的十大技術(shù) 。

    簡述crisprcas9的原理和用途

    簡述crisprcas9的原理和用途如下:

    CRISPR-Cas9技術(shù)原理:CRISPR-Cas9技術(shù)包含兩種重要的組分

    ,一種是行使DNA雙鏈切割功能的Cas9蛋白
    ,而另一種則是具有導(dǎo)向功能的gRNA。CRISPR-Cas9技術(shù)利用一段與靶序列互補的gRNA引導(dǎo)Cas9核酸酶對特異靶向DNA進(jìn)行識別和切割
    ,造成DNA的雙鏈或單鏈斷裂
    ,然后,細(xì)胞會利用自身具備的兩種DNA修復(fù)機制對斷裂的DNA進(jìn)行修復(fù)
    ,即非同源性末端接合或同源介導(dǎo)的修復(fù)

    CRISPR-Cas9用途:利用兩種修復(fù)機制,可以實現(xiàn)基因的插入和敲除

    。沒有模板的情況下
    ,利用NHEJ修復(fù),隨機插入或缺失序列造成基因敲除
    。有模板存在的情況下
    ,可通過HDR修復(fù)在剪切位點引入目的修飾基因,實現(xiàn)基因的定點修改

    主要功能

    CRISPR-Cas9是細(xì)菌和古細(xì)菌在長期演化過程中形成的一種適應(yīng)性免疫防御

    ,可用來對抗入侵的病毒及外源DNA。而CRISPR-Cas9基因編輯技術(shù)
    ,則是對靶向基因進(jìn)行特定DNA修飾的技術(shù)
    ,這項技術(shù)也是用于基因編輯中前沿的方法。

    以CRISPR-Cas9基礎(chǔ)的基因編輯技術(shù)在一系列基因治療的應(yīng)用領(lǐng)域都展現(xiàn)出極大的應(yīng)用前景

    ,例如血液病
    、腫瘤和其他遺傳疾病。該技術(shù)成果已應(yīng)用于人類細(xì)胞
    、斑馬魚
    、小鼠以及細(xì)菌的基因組精確修飾。

    專利授權(quán)

    2014年4月15日

    ,獲得了美國專利與商標(biāo)局關(guān)于CRISPR的第一個專利授權(quán)
    。專利權(quán)限包括在真核細(xì)胞或者任何細(xì)胞有細(xì)胞核的物種中使用CRISPR。這意味著擁有在除細(xì)菌之外的所有生物
    ,包括老鼠
    、豬和人身上使用CRISPR的權(quán)力

    CRISPR Cas9知識儲備第一彈:簡介

    CRISPR Cas9 -- C lustered R egularly I nterspaced S hort P alindromic R epeats CRISPR- A ssociated P roteins 9

    Crispr-CAS9系統(tǒng)最初在細(xì)菌和古生菌中觀察到,作為一種適應(yīng)性微生物免疫系統(tǒng)

    ,提供對外來病毒和質(zhì)粒的獲得性免疫
    ;已測序物種中,40%的細(xì)菌和90%的古生菌可觀察到CRISPR基因座
    ,且細(xì)菌中可能存在一個以上的基因座

    入侵的外來DNA被Cas核酸酶切割,然后以間隔序列的形式被保守的重復(fù)序列捕獲并整合到crispr位點

    ,所獲得的間隔物作為創(chuàng)建短CRISPR RNA(crRNAs
    ;create short CRISPR RNAs )的模板,它與反式激活cRNA(tracRNA
    ;trans-activating crRNA )形成復(fù)合物
    ;它們一起起到引導(dǎo)鏈的作用,將cas9核酸酶導(dǎo)向互補的入侵DNA(3)
    。一旦結(jié)合
    ,cas9蛋白通過其HNH和RuvC-like核酸酶結(jié)構(gòu)域分別切割“crRNA互補”及反義鏈。

    文獻(xiàn)中已描述45個不同的cas蛋白家族

    ,每一個家族在合成cRNA
    、整合新的間隔序列和切割入侵DNA中具有不同的作用。CRISPR-Cas系統(tǒng)通常分為三類
    ,這取決于Cas蛋白質(zhì)序列和結(jié)構(gòu):I型
    、II型和III型。目前常用于基因組編輯的CRISPR-Cas9系統(tǒng)是一個Ⅱ型CRISPR-Cas系統(tǒng)
    ,它是從化膿性鏈球菌(Streptococcus pyogenes)改編而來的

    內(nèi)切酶是化膿性鏈球菌產(chǎn)生的細(xì)菌CAS9核酸酶蛋白。CAS9核酸酶具有兩個DNA剪切結(jié)構(gòu)域(Ruvc1和HNH-like核酸酶域)

    ,可剪切雙鏈DNA使雙鏈斷裂(DSB
    ;double strand breaks)。

    gRNA是一種工程化的單鏈嵌合體RNA

    ,結(jié)合了細(xì)菌tracrRNA的支架功能和細(xì)菌crRNA的特異性
    。gRNA 5'端的最后20bp作為一個歸位裝置,通過RNA-DNA堿基配對
    ,將CAS9/GRNA復(fù)合物招募到PAM(protospacer adjacent motif )上游特定的DNA靶位
    。不同菌株和不同類型的CRISPR-Cas蛋白之間的PAM序列不同,化膿性鏈球菌Cas9的序列是5’-NGG
    。目前的CRISPR-CAS9系統(tǒng)可以直接用于任何5’-N20-NGG DNA序列
    ,并產(chǎn)生精確的雙鏈斷裂。然后
    ,通過在幾乎所有細(xì)胞類型和生物體中發(fā)現(xiàn)的兩種通用修復(fù)機制修復(fù)DSB:非同源末端連接(NHEJ
    ;the non-homologous end-joining )或同源定向修復(fù)(HDR
    ;the homology-directed repair)。

    NHEJ修復(fù)路徑是一種容易出錯的修復(fù)機制

    ,用于在沒有合適的修復(fù)模板的情況下修復(fù)雙鏈斷裂
    。NHEJ通路試圖將DSB的切割端連接在一起。然而
    ,這一過程往往導(dǎo)致DSB位點的插入或刪除(indels)突變
    ,導(dǎo)致移位或引入永久性破壞目標(biāo)基因開放閱讀框的成熟前終止密碼子。盡管NHEJ的INDEL結(jié)果很大程度上是隨機的
    ,但是科學(xué)家們可以通過將gRNA定位于相關(guān)基因的N末端來確保最大程度的基因破壞
    ;這將確保框架移位突變不會導(dǎo)致部分功能性基因產(chǎn)物
    。在利用NHEJ修復(fù)通路時,設(shè)計第一或第二外顯子中的gRNA并避免靶基因的內(nèi)含子區(qū)是一個很好的實踐

    除NHEJ

    ,細(xì)胞還能夠利用一種更精確的修復(fù)機制,即同源定向修復(fù)(HDR)途徑
    。這種修復(fù)機制可以用來引入特定的核苷酸修飾基因組DNA
    。在這種方法中,將與預(yù)期編輯位點上游和下游序列高度同源的DNA修復(fù)模板連同適當(dāng)?shù)膅RNA和CAS9核酸酶一起引入細(xì)胞
    。在這種合適的模板存在下
    ,不易出錯的HDR機制可以通過重組忠實地對CAS9誘導(dǎo)的DSB站點進(jìn)行所需的更改。在設(shè)計修復(fù)模板時
    ,請確保目標(biāo)序列沒有緊跟PAM序列
    ,或者PAM序列被排除或變異。這是為了避免使用相同的CRISPR-CAS9系統(tǒng)對修復(fù)模板進(jìn)行降解

    CRISPR-CAS9系統(tǒng)可以通過gRNA的設(shè)計針對任何基因組區(qū)域的特異性取決于位于目標(biāo)序列下游的PAM序列

    。作為細(xì)菌和古細(xì)菌免疫系統(tǒng),PAM識別序列激活CAS9的核酸酶域
    ,從而作為區(qū)分自我和非自我的手段(如:阻止CRISPR基因座被靶向)

    PAM識別序列因來源于CAS9核酸酶的細(xì)菌種類和類型而異。最常用的II型CRISPR系統(tǒng)使用來自化膿性鏈球菌的CAS9核酸酶

    。這種特殊的核酸酶在GRNA序列的3'端識別5'-NGG
    。其他市售CAS9可識別其他PAM序列。

    Table 1 : PAM Sequences from Different Species and Subtypes of Cas Nucleases.

    Cas9 Nickase是Cas9的一種突變形式

    ,其RuvC1 或HNH-like核酸酶域中分別有D10A 或H840A 突變
    ,這種突變形式導(dǎo)致在目標(biāo)位點產(chǎn)生單鏈刻痕而不是雙鏈斷裂。由于單鏈斷裂(或缺口)通常使用完整的互補DNA鏈作為修復(fù)模板通過HDR 途徑快速修復(fù)
    ,因此Cas9 Nickase可將脫靶效應(yīng)最小化

    為了利用Cas9 Nickase進(jìn)行基因組編輯

    ,需要兩個gRNA。這兩個gRNA需設(shè)計在相反的DNA鏈上
    ,但其距離很近
    ,以確保一旦兩個鏈被Cas9 Nickase切割,DSB就會被誘導(dǎo)
    。這對Cas9 Nickase修改減少了脫靶效應(yīng)
    ,因為需兩個gRNA共同產(chǎn)生一個DSB。一旦形成DSB
    ,NHEJ或HDR路徑將被激活以完成基因組編輯過程

    如果共同引入含有所需修飾的修復(fù)模板DNA與gRNA和Cas9 nickase,則Cas9 Nickase也可用于通過同源重組產(chǎn)生核苷酸修飾

    Table 2 : Cas9 Nickase and Nuclease Usage in Gene Disruption and Specific Gene Modification

    Cas9雙突變體或Null突變體是通過突變野生型Cas9的兩個切割結(jié)構(gòu)域而產(chǎn)生的

    。 這種Cas9蛋白保留了通過gRNA:基因組DNA堿基配對與基因組DNA結(jié)合的能力。 與Cas9核酸酶和Cas9 Nickase可以實現(xiàn)永久性基因破壞不同
    ,Cas9 Null突變體不引入任何基因組修飾
    。 通過將Cas9雙突變體與其他效應(yīng)蛋白融合,CRISPR Cas9系統(tǒng)可以將其作用擴展到基因調(diào)控
    ,基因組成像
    ,染色質(zhì)或DNA修飾以及染色質(zhì)免疫沉淀。

    Table 3 : Comparison of spCas9, saCas9, and Cpf1 nucleases

    large size and G-rich PAM sequence

    Cpf1于2015年底由麻省理工學(xué)院的Feng Zhang小組發(fā)現(xiàn)

    。在16種候選Cpf1蛋白中
    ,兩種在哺乳動物細(xì)胞中最具潛力的高特異性基因組編輯工具:asCpf1和lb2Cpf1。這些核酸酶在人類細(xì)胞中具有與常用spCas9相當(dāng)?shù)陌邢蚯懈钚省?/p>

    Cpf1允許新的定位可能性

    ,因為它識別富含T的PAM位點
    。與Cas9的富含G的PAM要求相比,這顯著擴大了可能的基因組目標(biāo)的范圍
    。雖然Cas9可能是靶向富含G的區(qū)域的優(yōu)選核酸酶
    ,但Cpf1可用于靶向富含T的區(qū)域。在哺乳動物細(xì)胞中
    ,Cpf1可以靶向如支架/基質(zhì)附著區(qū)域和著絲粒DNA的難以延伸的DNA片段
    。使用Cpf1還可以探索由富含AT的結(jié)構(gòu)域控制的細(xì)菌基因組,例如引起瘧疾的惡性瘧原蟲(Plasmodium falciparum)
    。同樣
    ,在Cas9的表達(dá)有毒的情況下,Cpf1可能是Cas9的有用替代品
    ,如在谷氨酸棒桿菌(Corynebacterium glutamicum)和幾種藍(lán)細(xì)菌(Cyanobacteria)中所見

    Cpf1需要較短的guide RNA才能運作。雖然Cas9需要tracrRNA的存在來處理crRNA

    ,但Cpf1可以自己處理pre-crRNA
    。這對于生物技術(shù)特別感興趣
    ,因為與用于Cas9的~100nt tracrRNA / crRNA雜交體相比,Cpf1可以僅用~42nt crRNA靶向
    。這將工程化sgRNA的大小減少了一半以上
    ,同時還簡化了與合成和化學(xué)修飾相關(guān)的方法和成本。這種自編輯功能也使Cpf1成為多重基因組編輯的最佳選擇
    ,因為更多的sgRNA可能適合一個載體

    另一個顯著差異是Cas9在切割后產(chǎn)生平端,而Cpf1留下可用于定向克隆的粘性5'突出端

    。產(chǎn)生粘性末端的其他方法
    ,例如限制酶消化,具有比Cpf1更短的識別序列
    ,因此切割性較低
    。已經(jīng)利用Cpf1的這種特性在體外進(jìn)行高度特異性的DNA組裝。在體內(nèi)使用這種方法
    ,科學(xué)家們可以對非分裂細(xì)胞(如神經(jīng)元)進(jìn)行DNA敲入
    ,通過HDR進(jìn)行基因組編輯尤其具有挑戰(zhàn)性。

    Cpf1切割PAM位點下游18-23bp的DNA

    ,導(dǎo)致NHEJ修復(fù)雙鏈DNA斷裂后對識別序列沒有破壞
    。導(dǎo)致Cpf1能夠進(jìn)行多輪DNA切割
    ,并且增加了進(jìn)行所需基因組編輯的機會
    。相比之下,由于Cas9僅在PAM位點上游切割3bp
    ,因此NHEJ途徑導(dǎo)致indel突變
    ,其破壞識別序列,從而防止進(jìn)一步的切割輪次
    。理論上
    ,重復(fù)的DNA切割輪次應(yīng)該導(dǎo)致Cpf1導(dǎo)致靶基因的沉默增加,并且在敲入實驗的情況下
    ,發(fā)生同源定向修復(fù)的機會更大

    Zhang等人的一項研究。表明Cpf1介導(dǎo)的基因組編輯可用于糾正誘導(dǎo)多能干細(xì)胞和小鼠的肌營養(yǎng)不良基因突變
    。這導(dǎo)致基因表達(dá)恢復(fù)
    ,小鼠癥狀得到糾正。 Cpf1也已成功用于蛋白質(zhì)-sgRNA復(fù)合物中
    ,以突變大豆和煙草植物中的基因

    雖然化膿性鏈球菌Cas9(S. pyogenes Cas9; spCas9)是最常用的CRISPR核酸酶,但最近的注意力已轉(zhuǎn)向從金黃色葡萄球菌中分離的微型Cas9核酸酶(S. aureus; saCas9)

    。這種小核酸酶通過使生物體內(nèi)基于CRISPR的基因編輯更加可行
    ,具有改變生物醫(yī)學(xué)研究產(chǎn)業(yè)的巨大潛力
    。 SaCas9和spCas9能夠以相當(dāng)?shù)男试隗w內(nèi)切割真核DNA。但saCas9具有幾個特性
    ,使其對某些應(yīng)用更有用

    SaCas9比spCas9小約1kb,使其能夠更有效地包裝到較小容量的腺相關(guān)病毒(AAV)中

    ,為調(diào)控元件
    ,crRNAs和tracrRNAs留下額外空間。通過將Cas9和sgRNA包含在一個構(gòu)建體(稱為All-In-One載體)中
    ,可以在一個轉(zhuǎn)染/轉(zhuǎn)導(dǎo)步驟中完成Cas9表達(dá)和sgRNA靶向
    。由于其低免疫原性和選擇性感染某些組織類型的能力,AAV是用于體內(nèi)研究的優(yōu)選基因遞送方法

    同樣

    ,與spCas9相比,saCas9為基因組編輯開辟了新的可能性
    ,因為它具有不同的定位能力
    。 spCas9識別5'-NGG-3'的PAM序列,而saCas9識別5'-NNGRRT-3'
    ?div id="d48novz" class="flower left">
    ?捎糜赑AM序列的更多種類意味著可用于基因組編輯的增加的基因座數(shù)量。當(dāng)需要使用同源定向修復(fù)精確編輯基因時
    ,這是特別有益的
    ,因為當(dāng)識別序列非常接近待編輯區(qū)域時HDR最有效。

    saCas9較長的PAM的一個缺點是

    ,該序列在基因組中的發(fā)生頻率低于spCas9的PAM序列
    ,限制了其潛在的效用。 然而
    ,saCas9較長的PAM序列應(yīng)該有助于防止脫靶的切割
    ,因為它具有更高的特異性。

    麻省理工學(xué)院張實驗室于2015年進(jìn)行的一項研究調(diào)查了體內(nèi)saCas9的表現(xiàn)

    。 他們將攜帶saCas9的AAV注射到小鼠體內(nèi)以破壞PCSK9基因
    ,該基因與家族性高膽固醇血癥有關(guān)。 這導(dǎo)致1周后肝組織中基因修飾> 40%
    ,注射后4周沒有毒性跡象
    。 最近的其他工作已經(jīng)用于開發(fā)具有使用分子進(jìn)化的松弛PAM識別特異性的變體saCas9。 與野生型saCas9相比
    ,這種變體允許更大范圍的潛在編輯目標(biāo)
    ,同時保留其小尺寸傳達(dá)的優(yōu)勢。

    鋅指核酸酶(Zinc-finger Nucleases; ZFNs)
    轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應(yīng)核酸酶(Transcription Activator-Like Effector Nucleases; TALENs)

    Table 4 : Comparison of current genome editing technologies

    An Intro to CRISPR Cas9

    “基因魔剪”安全性再遇什么挫折

    6月11日

    ,頂級學(xué)術(shù)期刊《自然》(Nature)子刊《自然-醫(yī)學(xué)》(Nature Medicine) 同時發(fā)表了兩篇新成果,給持續(xù)受到追捧的“基因魔剪” CRISPR技術(shù)潑了冷水
    。來自瑞典卡洛林斯卡研究所和劍橋諾華生物醫(yī)學(xué)研究院的兩個研究團隊分別將關(guān)注點投到了一處:CRISPR編輯成功或增加患癌風(fēng)險

    兩個團隊認(rèn)為,CRISPR/Cas9基因編輯過程中造成的DNA雙鏈斷裂

    ,會激活p53蛋白通路
    ,引起人多能干細(xì)胞的凋亡。反過來也就是說
    ,經(jīng)基因編輯后還能存活下來的細(xì)胞
    ,通常存在p53功能缺陷。?


    p53缺陷是至今已知的與癌癥相關(guān)的最普遍的基因突變

    。p53基因被稱為“抑癌基因”
    ,其編碼的p53蛋白的重要作用之一是調(diào)控細(xì)胞分裂和增殖。正常情況下
    ,一旦該基因察覺有嚴(yán)重DNA損傷或染色體結(jié)構(gòu)變異的“壞”細(xì)胞
    ,p53基因會抑制細(xì)胞的分裂,并引導(dǎo)細(xì)胞自殺
    ,因此也被冠以“基因警察”稱號
    。?

    CRISPR技術(shù)的安全性再次受到質(zhì)疑后,首當(dāng)其沖的是幾家基因編輯領(lǐng)域內(nèi)的公司

    。Editas Medicine
    、Intellia Therapeutics、CRISPR Therapeutics這三家在紐約納斯達(dá)克上市的公司
    , 6月11日當(dāng)天股票均大幅下挫
    ,跌幅分別為7.8%
    、9.81%和12.59%
    。截至6月12日,僅Intellia Therapeutics一家收住跌勢翻紅
    ,上漲1.55%
    。?

    增加患癌風(fēng)險
    此前的研究發(fā)現(xiàn),CRISPR/Cas9技術(shù)運用到人多能干細(xì)胞(hPSC)時

    ,效率通常低下
    ,僅為其他細(xì)胞類型的1/5或1/10。然而
    ,多能干細(xì)胞因其具有分化成多種成體細(xì)胞的潛能
    ,在疾病治療時被寄予厚望。??研究團隊認(rèn)為,在基因編輯前后
    ,確保p53功能正常至關(guān)重要
    。畢竟,如果編輯成功的前提是p53缺陷
    ,運用到臨床治療的后果是增加患者的患癌幾率

    CRISPR Therapeutics首席執(zhí)行官Sam Kulkarni此番也表示,該研究結(jié)果看起來是有道理的

    。并表示
    ,這是我們該重視的地方,尤其是目前 CRISPR 療法被應(yīng)用于越來越多的疾病中
    。我們要確保這些編輯過的細(xì)胞不會在回輸體內(nèi)后成為癌細(xì)胞

    來源:澎湃新聞網(wǎng)

    本文地址:http://m.mcys1996.com/jiankang/300151.html.

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